產品名稱：Simple Cloning T-vector(pSC-T)
產品編號與包裝規格：
| 編號 | 產品名稱 | 規格 | 產品介紹 | 價格 |
| HKT001-01A | Simple Cloning T-vector(pSC-T) | 20次 | T載體 | 540 |
| HKT001-01B | 20次×5 | 2398 |
產品描述：
Simple Cloning T-vector（pSC-T）是一種 PCR 產物高效 TA 克隆的專用 T 載體，本載體消除了 PCR 產物插入區域兩側的 多克隆位點。
在 PCR 克隆構建過程中，為了進一步的克隆步驟，常會 在PCR 產物的兩端引入專門的酶切位點，如 T 載體上已帶有 相同的酶切位點，會對下一步的酶切連接帶來不利的影響。為 消 除 多 克 隆 酶 切 位 點 帶 來 的 負 作 用 ， Simple Cloning T- Vector去除了PCR 產物插入區域兩側所有的酶切位點。帶有酶 切位點的 PCR 產物克隆后進行酶切時，T 載體上不會有相同 的酶切位點影響酶切反應，可以大大提高酶切效率，增加亞 克隆成功率。多克隆位點的消除并不影響 β-半乳糖苷酶的正 常表達，PCR 產物克隆后仍可以利用 α-互補性進行藍白斑篩 選，挑選陽性克隆。
由于本載體上消除了多克隆酶切位點，在 PCR 擴增引物設 計時需要考慮導入合適的酶切位點。
產品特點：提供 2×快速連接系統（15 分鐘即可完成連接反應）及 10×傳統 型連接系統（過夜連接可獲得最佳連接效果），具體使用說明見 后。
使用建議：
1）連接使用的 PCR 片段3' 端應帶有 A 末端，如果是使用 pfu 等高保真聚合酶擴增的不帶 A 末端的平末端片段，不可直 接用于進行連接反應。
2）克隆時使用的 Insert DNA 片段（PCR 產物）建議進行 切膠回收純化，否則 PCR 產物中的短片段 DNA、殘留引物等 雜質都會影響 TA 克隆效率。
3）轉化過程中建議使用 Control Insert DNA 做對照，以便 在實驗出現問題時確定原因。
保存溫度：-20℃
Simple Cloning T-vector(pSC-T) 產品包裝（A包裝）：
質量保證：
Control Insert 克隆后的白色菌落中，有90%以上含 有Insert DNA 片段。
克隆后，經測序確認''T''突出的存在。
操作方法：
1） 選擇合適的連接體系（詳細介紹見背面）。
2） 取10μL 加入至 100μL 感受態細胞中，用移液 槍吹打混合，冰上放置30 分鐘。
3） 將離心管置于 42℃水浴中，熱擊 60-90 秒，迅 速將離心管置于冰上，放置 2-3 分鐘。
4） 向每個離心管中加入 500μL 無菌不含抗生素的 LB 或SOC 培養基中，37℃搖床，150rpm 振蕩培養 45 分鐘，使質粒上氨芐抗性基因表達，菌體復蘇。
5） 吸取200μL 已轉化的感受態細胞，加到含氨芐 青霉素的 LB 或SOC 固體平板上，用無菌涂布棒將細 胞均勻涂開，將平板置于 37℃培養箱里直至液體完全 吸收，倒置培養 12-16 小時。
6） PCR檢測，利用試劑盒自帶的高速PCR擴增試 劑2×FastTaq Mast Mix直接進行菌落PCR鑒定。
A、常規連接反應體系（20μL）
| 組分 | 體積 |
| 10×Ligation Buffer | 2μL |
| pSC-Tvector（25 ng/μL） | 2μL |
| 目的PCR 片段/ Control Insert DNA | X μL/1 μL |
| T4 DNA Ligase | 1μL |
| ddH2O | 至 20μL |
反應條件：
1）16℃保溫 3 小時以上或過夜。
2）在4℃保溫過夜，或室溫數小時，但反應效率較16℃過夜略低。 實踐表明連接反應的溫度越低，達到理想連接效率所需時間越長，溫度 較高則所需時間較短。
注：10×Ligation Buffer融化時，如果出現少量沉淀屬正常現象，請于37℃ 溶解混勻后使用。
B、 快速連接反應體系：
| 組分 | 體積 |
| 2×Quick Ligation Buffer | 10μL |
| pSC-Tvector（25 ng/μL） | 2μL |
| 目的PCR 片段/ Control Insert DNA | X μL/1 μL |
| T4 DNA Ligase | 1μL |
| ddH2O | 至 20μL |
反應條件：
1）16℃ 或 25℃下，保溫15至30分鐘。
2）保溫5分鐘也能正常進行反應，但反應效率略為 降低。25℃下進行連接，其效果略差于16℃下連接效果。 而更高的溫度（>26℃）則較難形成環狀DNA。連接效率 偏低時，可適當延長連接反應時間，但過長的連接時間 （如數小時）連接效果反而會變差。一些較難連接的片 段（如大片段），請采用傳統型10× T4 DNA Ligation Buffer體系進行嘗試。
